Бардуков Н.В., Никипелов В.И., Отраднов П.И., Никипелова А.К.

Животноводство и кормопроизводство. 2026. Т. 109. № 3. С. 113-128.

Научная статья

УДК 597.442

doi: 10.33284/2658-3135-109-3-113

 

Повышение эффективности формирования ремонтно-маточного стада сибирского осетра (Acipenser baerii) в индустриальных условиях

Николай Владимирович Бардуков1, Владислав Игоревич Никипелов2,

Петр Ильич Отраднов3, Амина Кумаровна Никипелова4

1234Федеральный исследовательский центр животноводства – ВИЖ им. академика Л.К. Эрнста, Дубровицы, Россия

1bardukv-nikolajj@mail.ru, https://orcid.org/0000-0002-5497-2409

2vladnikipelovvij@mail.ru, https://orcid.org/0009-0008-6411-2454

3deriteronard@gmail.com, https://orcid.org/0000-0002-1153-5815

4nikipelova_aminavij@mail.ru, https://orcid.org/0009-0002-8248-7555

Аннотация. В статье представлены результаты разработки и экспериментальной апробации комплексного подхода к формированию ремонтно-маточного стада сибирского осетра (Acipenser baerii) в условиях аквакультуры. Исследования проведены на 385 особях ленской популяции (генерация 2022) в установке замкнутого водоснабжения в 2023-2026 гг. Генетическое определение пола выполняли методом ПЦР в реальном времени с использованием специфичного по отношению к полу маркера AllWSex2. Сравнительный морфометрический анализ выявил, что в возрасте до 2 лет достоверных различий между самцами и самками по массе и линейным размерам не наблюдалось, однако после 2,5 лет самцы начинают статистически значимо отставать от самок (P≤0,05-0,001), что связано с более ранним половым созреванием самцов. К 3 годам 11 месяцам средняя масса самок (7976,09 г) превышала массу самцов (6988,8 г) на 14 %. Ультразвуковая диагностика в возрасте 3 лет 11 месяцев подтвердила пол у 93,0 % особей (совпадение с генетическим тестом: самки – 96,7 %, самцы – 88,9 %). Выявлено 7,0% особей с аномалиями развития гонад, подлежащих выбраковке. Разработанный комплексный подход позволяет повысить эффективность селекционной работы и снизить экономические издержки при формировании ремонтно-маточных стад осетровых в аквакультуре.

Ключевые слова: аквакультура, сибирский осетр, ремонтно-маточное стадо, AllWSex2, ультразвуковая диагностика, ПЦР в реальном времени, половой диморфизм

Благодарности. работа выполнена в соответствии с планом НИР на 2025-2027 гг. ФГБНУ ФИЦ ВИЖ им. Л.К. Эрнста (№ FGGN-2025-0005).

Для цитирования: Повышение эффективности формирования ремонтно-маточного стада сибирского осетра (Acipenser baerii) в индустриальных условиях / Н.В. Бардуков, В.И. Никипелов, П.И.  Отраднов,  А.К.  Никипелова  //  Животноводство  и  кормопроизводство. 2026. Т. 109. № 3. С. 113-128. [Bardukov NV, Nikipelov VI, Otradnov PI, Nikipelova AK. Improving the efficiency of formation of Siberian sturgeon (Acipenser baerii) replacement broodstock in industrial conditions. Animal Husbandry and Fodder Production. 2026;109(3):113-128. (In Russ.)]. https://doi.org/10.33284/2658-3135-109-3-113

Список источников

  1. Барулин Н.В., Богданов Р.Е. Оценка возможности определения готовности самок веслоноса к нересту при помощи ультразвуковой диагностики // Животноводство и ветеринарная медицина. № 1(40). С. 33-39. [Barulin NV, Bogdanov RE. Estimation of possibility of determination of readiness of paddlefish females to spawning with the help of ultrasonic diagnostics. Animal Agriculture and Veterinary Medicine. 2021;1(40):33-39. (In Russ.)].
  2. Крылов В.Д., Соколов Л.И. Методика морфометрических исследований осетровых рыб. М.: ВНИРО, 1981. 76 с. [Krylov VD, Sokolov LI. Metodika morfometricheskikh issledovaniy osetrovykh ryb. Moscow: VNIRO; 1981:76 p. (In Russ.)].
  3. Определение достоверности происхождения сибирского осетра на основе результатов микросателлитного  анализа  и  коэффициентов  генетического  сходства  /  Н.В. Бардуков, А.К. Никипелова, П.И. Отраднов, В.И. Никипелов, А.А. Белоус // Животноводство и кормопроизводство. Т. 107. № 4. С. 106-119. [Bardukov NV, Nikipelova AK, Otradnov PI, Nikipelov VI, Belous AA. Determining the reliability of the origin of Siberian sturgeon based on the results of microsatellite analysis and genetic similarity coefficients. Animal Husbandry and Fodder Production. 2024;107(4):106-119. (In Russ.)]. doi: 10.33284/2658-3135-107-4-106
  4. Оценка племенной ценности сибирского осетра (Acipenser baerii) на основании системы генетической паспортизации / П.И. Отраднов, В.И. Никипелов, А.К. Никипелова, А.Ю. Боборыкин, А.А. Белоус // Животноводство и кормопроизводство. Т. 108. № 3. С. 149-168. [Otradnov PI, Nikipelov VI, Nikipelova AK, Boborykin AYu, Belous AA. Breeding assessment of Siberian sturgeon (Acipenser baerii) based on the system of genetic certification. Animal Husbandry and Fodder Production. 2025;108(3):149-168. (In Russ.)]. doi: 10.33284/2658-3135-108-3-149
  5. Трусов В.З. Некоторые особенности созревания и шкала зрелости половых желез осетра. Осетровые Южных морей Советского Союза // Труды ВНИРО. 1964. Т. 56. Сб. 3. С. 69-78. [Trusov VZ. Nekotorye osobennosti sozrevaniya i shkala zrelosti polovykh zhelez osetra. Osetrovye Yuzhnykh morey Sovetskogo Soyuza. Trudy VNIRO. 1964;56(3):69-78. (In Russ.)].
  6. Фенотипические показатели сибирского осетра, разводимого в условиях замкнутого водоснабжения: св-во о государственной регистрации базы данных № 2024620556 Рос. Федерация / Н.А. Зиновьева, и др. Заявл. 25.01.2024; опубл. 05.02.2024, Бюл. № 2. [Zinovieva NA, et al. Fenotipicheskie pokazateli sibirskogo osetra, razvodimogo v usloviyah zamknutogo vodosnabzheniya: sv-vo o gosudarstvennoj registracii bazy dannyh № 2024620556 Ros. Federaciya. 25.01.2024; opubl. 05.02.2024, Byul. № 2. (In Russ.)].
  7. Хатунцов Д.С., Ларкин А.Д. Аквакультура как наиболее эффективное средство восстановления популяции осетровых // Дельта науки. 2019. № 2. С. 135-139. [Khatuntsov DS, Larkin AD. Akvakul'tura kak naibolee effektivnoe sredstvo vosstanovleniya populyatsii osetrovykh. Del'ta nauki. 2019;2:135-139. (In Russ.)].
  8. Чебанов М.С., Галич Е.В. Оптимизация формирования и использования маточных стад осетровых рыб: новые возможности ультразвукового скрининга // Актуальные вопросы рыболовства, рыбоводства (аквакультуры) и экологического мониторинга водных экосистем: материалы Междунар. науч.-практ. конф., посвящ. 90-летию Азовского НИИ рыбного хозяйства (Ростов-на-Дону, 11-12 дек. 2018 г.). Ростов-на-Дону: Азовский НИИ рыбного хозяйства, 2018. С. 84-88. [Chebanov MS, Galich EV. Optimization of the formation and use of sturgeon broodstocks: new prospects for ultrasonic screening. (Conference proceedings) Aktual'nye voprosy rybolovstva, rybovodstva (akvakul'tury) i ekologicheskogo monitoringa vodnykh ekosistem: Materialy Mezhdunarodnoy nauchno-prakticheskoy konferentsii, posvyashchennoy 90-letiyu Azovskogo nauchno-issledovatel'skogo instituta rybnogo khozyaystva (Rostov-na-Donu, 11-12 dekabrya 2018 goda). Rostov-na-Donu: Azovskiy nauchno-issledovatel'skiy institut rybnogo khozyaystva; 2018:84-88. (In Russ.)].
  9. Ak K, Kurtoglu IZ, Serezli R, Kayış S, Yandı I. Introduce the Siberian Sturgeon (Acipenser baerii) to Turkish aquaculture industry: Duoculture possibility with Rainbow Trout. Ege Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 2019; 36(3):211-217. doi: 10.12714/egejfas.2019.36.3.02
  10. Belous AA, Otradnov PI, Nikipelova AK, Bardukov NV, Nikipelov VI, Shishanov GA, Rakova AS, Ilyushina PS, Gusev IV, Zinovieva NA. Growth and Development Dynamic of the Lena Population Siberian Sturgeon (Acipenser baerii Brandt, 1869) Bred in a Recirculating Aquaculture System. Animals. 2026; 16(4):677. doi: 10.3390/ani16040677
  11. Bronzi P, Chebanov M, Michaels J, Wei Q, Rosenthal H, Gessner J. Sturgeon meat and caviar production: Global update 2017. Journal of Applied Ichthyology. 2019;35(1):257-266. doi: 10.1111/jai.13870
  12. Chandra G, Fopp-Bayat D. Trends in aquaculture and conservation of sturgeons: a review of molecular and cytogenetic tools. Reviews in Aquaculture. 2021;13(1):119-137. doi: 10.1111/raq.12466
  13. Curzon AY, Shirak A,  Meerson A,  Degani G, Hurvitz A, Ben-Naim N, Domovitz R, Ron M, Seroussi E. Cross-species conservation of a transposase-linked element enables genetic sexing of commercial populations of Russian sturgeon (Acipenser gueldenstaedtii). Animal Genetics. 2022;53(3):441-446. doi: 10.1111/age.13188
  14. Golpour A, Broquard C, Milla S, Dadras H, Baloch AR, Saito T, Pšenička M. Determination of annual reproductive cycle in male sterlet, Acipenser ruthenus using histology and ultrasound imaging. Fish Physiology and Biochemistry. 2021;47(3):703-711. doi: 10.1007/s10695-020-00892-8
  15. He S, Du H, Ren P, Leng XQ, Tan Q, Li CJ, Liang XF, Wei Q. Transcriptome analysis of ovarian maturation in a chondrostei Chinese sturgeon Acipenser sinensis. Journal of Experimental Zoology Part B: Molecular and Developmental Evolution. 2020;334(5):280-293. doi: 10.1002/jez.b.22973
  16. Kazemi R, Yarmohammadi M, Hallajian A, Jalilpour J, Parashkoh H. Determination of sex and maturity stage of great sturgeon (Huso huso) using steroid sex hormones profiles, histology and laparoscopic images of gonads. Journal of Applied Ichthyology. 2019;35(5):1084-1093. doi: 10.1111/jai.13948
  17. Keyvanshokooh S, Gharaei A. A review of sex determination and searches for sex‑specific markers in sturgeon. Aquaculture Research. 2010;41(9):e1-e7. doi: 10.1111/j.1365-2109.2009.02463.x
  18. Kuhl H, Guiguen Y, Hohne C, Kreuz E, Du K, Klopp C, Lopez-Roques C, Yebra-Pimentel ES, Ciorpac M, Gessner J, Holostenco D, Kleiner W, Kohlmann K, Lamatsch DK, Prokopov D, Bestin A, Bonpunt E, Debeuf B, Haffray P, Morvezen R, Patrice P, Suciu R, Dirks R, Wuertz S, Kloas W, Schartl M, Stöck M. A 180 Myr-old female-specific genome region in sturgeon reveals the oldest known vertebrate sex determining system with undifferentiated sex chromosomes. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 2021;376(1832):20200089. doi: 10.1098/rstb.2020.0089
  19. Maskill P, Crossman J, Webb M, Marrello M, Guy C. Accuracy of histology, endoscopy, ultrasonography, and plasma sex steroids in describing the population reproductive structure of hatchery‑origin and wild white sturgeon. Journal of Applied Ichthyology. 2021;38(1):3-16. doi: 10.1111/jai.14280
  20. Oskina AA, Aitkalieva AA, Gabdullina AT, et al. Application of the ultrasound scanning method in sturgeon breeding. Science and Education. 2022;3-2(68):172-177. doi: 10.56339/2305-9397-2022-3-2-172-177
  21. Panagiotopoulou H, et al. Extensive search of genetic sex markers in Siberian (Acipenser baerii) and Atlantic ( oxyrinchus) sturgeons. Aquaculture. 2023;573:739517. doi: 10.1016/j.aquaculture.2023.739517
  22. Pueppke SG, Nurtazin S, Murzashev T, Galymzhanov I, Graham N, Konysbaev T. Re-establishing naturally reproducing sturgeon populations in the caspian basin: a wicked problem in the Ural River. Water. 2023;15(19):3399. doi: 10.3390/w15193399
  23. Sard NM, Kreiser BR, Pendleton RM, et al. Validation of a molecular sex marker in three sturgeons from eastern North America. Conservation Genetics Resources. 2024;16:173-177. doi: 10.1007/s12686-024-01346-6
  24. Scribner KT, Kanefsky J. Molecular sexing of lake sturgeon. Journal of Great Lakes Research. 2021;47(3):934-936. doi: 10.1016/j.jglr.2021.03.015
  25. Tavakoli S, Luo Y, Regenstein JM, Daneshvar E, Bhatnagar A, Tan Y, Hong H. Sturgeon, caviar, and caviar substitutes: from production, gastronomy, nutrition, and quality change to trade and commercial mimicry. Reviews in Fisheries Science & Aquaculture. 2021;29(4):753-768. doi: 10.1080/23308249.2021.1873244
  26. Vasilyeva LM, Elhetawy AIG, Sudakova NV, Astafyeva SS. History, current status and prospects of sturgeon aquaculture in Russia. Aquaculture Research. 2019;50(4):979-993. doi: 10.1111/are.13997
  27. Vizziano-Cantonnet D, Di Landro S, Lasalle A. Sex determination and differentiation of the Siberian Sturgeon. In: Williot P, Nonnotte G, Vizziano-Cantonnet D, Chebanov M, editors. The Siberian Sturgeon (Acipenser baerii, Brandt, 1869) Volume 1 - Biology. Cham: Springer; 2018:93-113. doi: 10.1007/978-3-319-61664-3_6
  28. Wuertz S, Gaillard S, Barbisan F, Carle S, Congiu L, Forlani A, Aubert J, Kirschbaum F, Tosi E, Zane L, Grillasca J-P. Extensive screening of sturgeon genomes by random screening techniques revealed no sex-specific marker. Aquaculture. 2006;258(1-4):685-688.

Информация об авторах:

Николай Владимирович Бардуков, научный сотрудник лаборатории генетических технологий в агро- и аквахозяйстве, Федеральный исследовательский центр животноводства – ВИЖ имени академика  Л.К.  Эрнста,  142132,  Московская  область,  городской  округ  Подольск,  п. Дубровицы, д. 60, тел.: +79854344920.

Владислав Игоревич Никипелов, младший научный сотрудник лаборатории генетических технологий в агро- и аквахозяйстве, Федеральный исследовательский центр животноводства – ВИЖ имени академика  Л.К.  Эрнста,  142132, Московская область, городской округ Подольск, п. Дубровицы, д. 60, тел.: +79270752759.

Петр Ильич Отраднов, младший научный сотрудник лаборатории генетических технологий в агро- и аквахозяйстве, Федеральный исследовательский центр животноводства – ВИЖ имени академика  Л.К.  Эрнста,  142132, Московская область, городской округ Подольск, п. Дубровицы, д. 60, тел.: +79296131475.

Амина Кумаровна Никипелова, младший научный сотрудник лаборатории генетических технологий в агро- и аквахозяйстве, Федеральный исследовательский центр животноводства – ВИЖ имени академика  Л.К.  Эрнста,  142132, Московская область, городской округ Подольск, п. Дубровицы, д. 60, тел.: +79275708398.

Статья поступила в редакцию 20.04.2026; одобрена после рецензирования 23.06.2026; принята к публикации 14.09.2026.

Загрузить